1. Ausbildungsjahr

1.Halbjahr

Vom 01.08.1996 – 31.12.1996 war ich im Rahmen der betrieblichen Ausbildung in meiner ersten Abteilung, in der naturwissenschaftlich technische Ausbildung.

Das ist eine Art Grundpraktikum, die jeder Auszubildende Biologielaborant bei der Firma Grünenthal GmbH durchläuft.

Inhalte:

• Herstellen von Lösungen
• Umgang mit Präzisions- und Analysenwaagen
• Pipettieren von Flüssigkeiten mit Glas- und Kolbenhubpipetten
• Überprüfung der Präzision und der Richtigkeit von Kolbenhubpipetten
• Dichtebestimmung von Lösungen mit dem Pyknometer
• Zentrifugation und Filtration als Trennverfahren grobdisperser Systeme
• Chromatographie
  • DC von Farbstoffen auf unterschiedlichen stationären Phasen und mit unterschiedlichen Laufmitteln
  • DC von Aminosäuren
  • DC eines Proteinhydrolysats nach saurer Hydrolyse
  • Gelchromatographie von Dextran Blau und Kaliumdichromat auf Sephadex G25; dabei Ansatz des Trennpuffers und photometrische Messung des Eluats bei 280 nm

• Grundübungen zum Umgang mit Versuchstieren (Maus, Ratte)
  • allgemeines Handling
  • Farbmarkierung
  • Üben folgender Applikationsarten: peroral, intraperitoneal und subkutan an Maus und Ratte sowie intravenös an der Maus
  • Euthanasie durch CO₂-Inhalation
  • Sektion einer weiblichen und einer männlichen Ratte
• photometrische Methoden
  • Bestimmung der Absorptionsmaxima und den Extinktionskoeffizienten von Farbstoffen im Bereich zwischen 400 nm und 800 nm sowie von NAD und NADH₂ im Bereich zwischen 200 nm und 400 nm
  • Überprüfung der Gültigkeit des Lambert-Beerschen Gesetzes für einen Farbstoff und NADH₂
    durch Ansatz von Verdünnungsreihen und Messung im Maximum
  • Proteinbestimmung nach Biuret
  • Bestimmung von Glucose mit der GOD-PAP-Methode, von Harnstoff mit der Methode nach Berthelot sowie von Triglyceriden nach der GPO-PAP-Methode, alle Bestimmungen wurden mit Testsets der Fa. Boehringer Mannheim durchgeführt
• mikrobiologische Methoden
  • Ansatz und Sterilisation von Nährmedien aus Einzelreagenzien oder als Fertignährmedium; dabei Einstellung des pH-Wertes
  • Anfertigung von fraktionierten Ausstrichen um Einzelkolonien zu erhalten
  • Bestimmung des Gramverhaltens (Färbung/KOH-Test) und Prüfung auf Oxidase und Katalse
  • Untersuchung des Wachstums auf Differential- und Selektivnährböden
  • Anzucht von Lactobacillus acidophilus aus Joghurt auf Rogosa-agar
  • Wachstumskurve von E.coli und Bestimmung des Verbrauchs von Glucose während des Wachstums
  • Überprüfung der Einwirkung von Doxyxyclin-HCl und Benzylpenicillin auf die Wachstumskurve von E.coli
  • Bestimmung der Lebendzellzahl durch das Auftropfverfahren, durch Filtration sowie durch Ausspateln
  • Bestimmung der MHK und MBK von Antibiotika
  • Agardiffusionstest
• Darstellung und Auswertung von Methoden und Ergebnissen in Protokollen
• Darstellung und Auswertung von Messergebnissen mit Hilfe von Koordinatensystemen mit arithmetischer und halblogarithmischer Skalierung der Achsen ( Auf Doppeltlogarithmisches Papier mit Bleistift und Lineal gezeichnet)
• Berechnung des arithmetischen Mittelwertes, von s_× und des VK-Wertes

2.Halbjahr

Vom 01.01.1997 – 30.06.1997 war ich im Rahmen der betrieblichen Ausbildung  in der Pharmakologie beschäftigt.

Folgende Tätigkeiten habe ich dort durchgeführt:

• Allgemeine Labortätigkeiten
  • Herstellen von Prüfsubstanzzubereitungen für in vivo- und in vitro-Applikationen. Verwendung verschiedener Lösungsmittel; unterschiedliche Dosis- bzw. Konzentrationsreihen.
  • Narkose von Labornagern (Mäuse, Ratten): verschiedene Narkosemittel (Pentobarbital, Ketamin, Xylazine, Urethan).
  • Erstellen von Prüfprotokollen unter Benutzung der laborüblichen Hard- und Softwareprogramme ( z.B. MS Excel, Fig-P, Systat, Regressionsberechnungen für IC₅₀ und ED₅₀).
• Blutdruckmessung an der narkotisierten Ratte
  • Herstellen von Kathetern für intravenöse und intraarterielle Implantationen.
  • Operative Katheterimplantation in A.carotis, A.femoralis, V.jugularis und V.femoralis an narkotisierten Ratten.
  • Anschluß von Druckaufnehmer (z.B. Statham Pressure Transducer) an implantierte Katheter und an Druckregistriersystem (z.B. Hellige-Meßapparatur).
  • Aufnahme, Registrierung und Auswertung von Druckverlaufskurven (systolischer, diastolischer Blutdruck, Herzfrequenz); Berechnung des mittleren arteriellen Druckes.
  • intravenöse Applikationen (über implantierte Katheter) von Testsubstanzen (z.B. Noradrenalin, Acetylcholin, Phentolamin, Atropin und Natriumnitroprussid) mit unterschiedlichen Wirkungen auf Blutdruck und Herzfrequenz (steigernd und senkend).
• Isoliert perfundiertes Rattenherz nach Oscar Langendorff
  • Narkose und in situ-Kanülierung der Aorta thoracalis.
  • Entnahme des Herzens und Anschluß an die Perfusionsanlage
  • Retrograde Perfusion mit begaster Nährlösung unter konstantem hydrostatischem Druck.
  • Messung der Kontraktionskraft und des Koronardurchflusses mittels elektromagnetischem Strömungsmesser.
  • Infusion vasoaktiver Substanzen (Serotonin, Na-Nitroprussid) und Registrierung der Effekte auf Kontraktionskraft und Koronarfluß.
• Kohlepassage an Ratte und Maus
  • Durchführung und Auswertung